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MDCK-II 细胞的3D培养实验细节求助
搜索技巧
2818
1
田晟源
来自
北京
,
发表于:2023-02-27 22:12:27
最近在进行MDCK-II细胞的3D培养实验,搜索了很多文献但是对于实验细节以及相关材料的列举都很粗略,不知道有没有大神做过这个实验可以提供一下protocol吗?
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沙发
在水一方
站长
2023-02-28 14:04:01
发布自
乌克兰
,
MDCK-II细胞是一种常用的肾小管上皮细胞系,已经被广泛应用于细胞培养、药物筛选、毒性评价等领域。3D培养是一种新兴的细胞培养技术,可以更好地模拟体内细胞的三维结构和生理功能,因此在组织工程和药物研发等方面具有广泛的应用前景。以下是一个可能适用于MDCK-II细胞的3D培养实验protocol供参考:
材料:
• 96孔超低吸附力平板(Corning Costar,Cat. No. 7007)
• 培养基:DMEM/F-12(Gibco,Cat. No. 11320082)+ 10% FBS(Gibco,Cat. No. 10099141)
• 0.25% 胰岛素溶液(Sigma,Cat. No. I1882)
• Matrigel(Corning,Cat. No. 354234)
实验步骤:
1. 将Matrigel在4℃下解冻,并在冰上预冷。
2. 在96孔超低吸附力平板中加入每孔25μL的Matrigel,然后在37℃的CO2培养箱中孵育30分钟,使Matrigel凝胶化。
3. 在每孔中加入100μL的MDCK-II细胞悬液,密度为2×10^4个/mL。注意避免气泡的产生。
4. 放置在37℃的CO2培养箱中,使细胞在Matrigel中形成3D结构,通常需要3-5天的时间。
5. 每隔一天更换一次DMEM/F-12培养基,加入0.25%胰岛素溶液,以促进细胞的生长和分化。
6. 在所需时间点(通常为3-5天)结束实验,取出细胞,可以进行进一步的分析,如染色、免疫荧光等。
注意事项:
1. Matrigel的浓度可以根据需要进行调整,一般建议使用1-2倍的浓度。
2. 细胞密度也可以根据需要进行调整,但是过高或过低的密度都可能影响细胞的3D结构和功能。
3. 实验过程中需要避免氧气和营养物质的不均匀分布,可以适当搅拌平板,但是不能产生气泡。
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• 96孔超低吸附力平板(Corning Costar,Cat. No. 7007)
• 培养基:DMEM/F-12(Gibco,Cat. No. 11320082)+ 10% FBS(Gibco,Cat. No. 10099141)
• 0.25% 胰岛素溶液(Sigma,Cat. No. I1882)
• Matrigel(Corning,Cat. No. 354234)
实验步骤:
1. 将Matrigel在4℃下解冻,并在冰上预冷。
2. 在96孔超低吸附力平板中加入每孔25μL的Matrigel,然后在37℃的CO2培养箱中孵育30分钟,使Matrigel凝胶化。
3. 在每孔中加入100μL的MDCK-II细胞悬液,密度为2×10^4个/mL。注意避免气泡的产生。
4. 放置在37℃的CO2培养箱中,使细胞在Matrigel中形成3D结构,通常需要3-5天的时间。
5. 每隔一天更换一次DMEM/F-12培养基,加入0.25%胰岛素溶液,以促进细胞的生长和分化。
6. 在所需时间点(通常为3-5天)结束实验,取出细胞,可以进行进一步的分析,如染色、免疫荧光等。
注意事项:
1. Matrigel的浓度可以根据需要进行调整,一般建议使用1-2倍的浓度。
2. 细胞密度也可以根据需要进行调整,但是过高或过低的密度都可能影响细胞的3D结构和功能。
3. 实验过程中需要避免氧气和营养物质的不均匀分布,可以适当搅拌平板,但是不能产生气泡。