Revolutions in Lipid Isomer Resolution: Application of Ultrahigh-Resolution Ion Mobility to Reveal Lipid Diversity

化学 脂质体 离子迁移光谱法 脂类学 分辨率(逻辑) 双键 结构异构体 质谱法 碳纤维 离子 色谱法 立体化学 有机化学 生物化学 材料科学 人工智能 复合数 计算机科学 复合材料
作者
Berwyck L. J. Poad,Lachlan J. Jekimovs,Reuben S. E. Young,Puttandon Wongsomboon,David L. Marshall,Felicia Hansen,Therese M. Fulloon,Michael C. Pfrunder,Tyren M. Dodgen,Mark Ritchie,Stephen C. C. Wong,Stephen J. Blanksby
出处
期刊:Analytical Chemistry [American Chemical Society]
卷期号:95 (43): 15917-15923 被引量:13
标识
DOI:10.1021/acs.analchem.3c02658
摘要

Many families of lipid isomers remain unresolved by contemporary liquid chromatography-mass spectrometry approaches, leading to a significant underestimation of the structural diversity within the lipidome. While ion mobility coupled to mass spectrometry has provided an additional dimension of lipid isomer resolution, some isomers require a resolving power beyond the capabilities of conventional platforms. Here, we present the application of high-resolution traveling-wave ion mobility for the separation of lipid isomers that differ in (i) the location of a single carbon-carbon double bond, (ii) the stereochemistry of the double bond (cis or trans), or, for glycerolipids, (iii) the relative substitution of acyl chains on the glycerol backbone (sn-position). Collisional activation following mobility separation allowed identification of the carbon-carbon double-bond position and sn-position, enabling confident interpretation of variations in mobility peak abundance. To demonstrate the applicability of this method, double-bond and sn-position isomers of an abundant phosphatidylcholine composition were resolved in extracts from a prostate cancer cell line and identified by comparison to pure isomer reference standards, revealing the presence of up to six isomers. These findings suggest that ultrahigh-resolution ion mobility has broad potential for isomer-resolved lipidomics and is attractive to consider for future integration with other modes of ion activation, thereby bringing together advanced orthogonal separations and structure elucidation to provide a more complete picture of the lipidome.
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