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Non-invasive monitoring of the kinetic infiltration and therapeutic efficacy of nanoparticle-labeled chimeric antigen receptor T cells in glioblastoma via 7.0-Tesla magnetic resonance imaging

磁共振成像 嵌合抗原受体 体内 抗原 免疫染色 癌症研究 叶酸受体 灌注 细胞 病理 医学 化学 免疫疗法 生物 免疫组织化学 免疫学 癌细胞 癌症 放射科 内科学 免疫系统 生物技术 生物化学
作者
Tian Xie,Xiao Chen,Jingqin Fang,Wei Xue,Junfeng Zhang,Haipeng Tong,Heng Liu,Yu Guo,Yizeng Yang,Weiguo Zhang
出处
期刊:Cytotherapy [Elsevier BV]
卷期号:23 (3): 211-222 被引量:14
标识
DOI:10.1016/j.jcyt.2020.10.006
摘要

Background aims Chimeric antigen receptor (CAR) T-cell therapy is a promising treatment strategy in solid tumors. In vivo cell tracking techniques can help us better understand the infiltration, persistence and therapeutic efficacy of CAR T cells. In this field, magnetic resonance imaging (MRI) can achieve high-resolution images of cells by using cellular imaging probes. MRI can also provide various biological information on solid tumors. Methods The authors adopted the amino alcohol derivatives of glucose-coated nanoparticles, ultra-small superparamagnetic particles of iron oxide (USPIOs), to label CAR T cells for non-invasive monitoring of kinetic infiltration and persistence in glioblastoma (GBM). The specific targeting CARs included anti-human epidermal growth factor receptor variant III and IL13 receptor subunit alpha 2 CARs. Results When using an appropriate concentration, USPIO labeling exerted no negative effects on the biological characteristics and killing efficiency of CAR T cells. Increasing hypointensity signals could be detected in GBM models by susceptibility-weighted imaging MRI ranging from 3 days to 14 days following the injection of USPIO-labeled CAR T cells. In addition, nanoparticles and CAR T cells were found on consecutive histopathological sections. Moreover, diffusion and perfusion MRI revealed significantly increased water diffusion and decreased vascular permeability on day 3 after treatment, which was simultaneously accompanied by a significant decrease in tumor cell proliferation and increase in intercellular tight junction on immunostaining sections. Conclusion These results establish an effective imaging technique that can track CAR T cells in GBM models and validate their early therapeutic effects, which may guide the evaluation of CAR T-cell therapies in solid tumors.
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