A cloning and expression system to probe T-cell receptor specificity and assess functional avidity to neoantigens

T细胞受体 贪婪 生物 T细胞 免疫学 表达式克隆 计算生物学 遗传学 免疫系统 抗原 基因 肽序列
作者
Zhuting Hu,Annabelle Anandappa,Jing Sun,Jintaek Kim,Donna Leet,David J. Bozym,Christina Chen,Louise Williams,Sachet A. Shukla,Wandi Zhang,Diana Tabbaa,Scott Steelman,Oriol Olive,Kenneth J. Livak,Hiroyuki Kishi,Atsushi Muraguchi,Indira Guleria,Jonathan Stevens,William J. Lane,Ute Burkhardt,Edward F. Fritsch,Donna Neuberg,Patrick A. Ott,Derin B. Keskin,Nir Hacohen,Catherine J. Wu
出处
期刊:Blood [American Society of Hematology]
卷期号:132 (18): 1911-1921 被引量:45
标识
DOI:10.1182/blood-2018-04-843763
摘要

Recent studies have highlighted the promise of targeting tumor neoantigens to generate potent antitumor immune responses and provide strong motivation for improving our understanding of antigen-T-cell receptor (TCR) interactions. Advances in single-cell sequencing technologies have opened the door for detailed investigation of the TCR repertoire, providing paired information from TCRα and TCRβ, which together determine specificity. However, a need remains for efficient methods to assess the specificity of discovered TCRs. We developed a streamlined approach for matching TCR sequences with cognate antigen through on-demand cloning and expression of TCRs and screening against candidate antigens. Here, we first demonstrate the system's capacity to identify viral-antigen-specific TCRs and compare the functional avidity of TCRs specific for a given antigen target. We then apply this system to identify neoantigen-specific TCR sequences from patients with melanoma treated with personalized neoantigen vaccines and characterize functional avidity of neoantigen-specific TCRs. Furthermore, we use a neoantigen-prediction pipeline to show that an insertion-deletion mutation in a putative chronic lymphocytic leukemia (CLL) driver gives rise to an immunogenic neoantigen mut-MGA, and use this approach to identify the mut-MGA-specific TCR sequence. This approach provides a means to identify and express TCRs, and then rapidly assess antigen specificity and functional avidity of a reconstructed TCR, which can be applied for monitoring antigen-specific T-cell responses, and potentially for guiding the design of effective T-cell-based immunotherapies.
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